jueves, 12 de marzo de 2015

Práctica XXXVI:P3 (5/03/2015)

PRUEBA DE RUMPEL-LEEDE.
Fundamento.
Esta práctica ofrece información sobre la fragilidad capilar.

Material.

  • Un rotulador.
  • Un esfigmomanómetro,
  • Un fonendoscopio.
  • Un reloj.
Procedimiento.
  1. Lo primero que hay que hacer es medir la presión arterial.
  2. Trazamos un circulo de unos 5 cm de diámetro en la cara anterior del antebrazo.
  3. Colocar el esfigmomanómetro en el brazo donde se ha pintado el circulo.
  4. Insuflar aire del maguito del  esfigmomanómetro hasta ejercer una presión equivalente a la presión arterial media de la persona que esta realizando la prueba.
  5. Mantenerlo durante 5 minutos.
  6. Aflojar y retirar el esfigmomanómetro.
  7. Contar la petequias que hayan aparecido en el interior del cirulo.
Forma de tomar la presión.

Resultado.
Resultado de la presión arterial es de:
Presión sistólica : 10
Presión diastolica: 6

La media es 8.

No se ha observado ninguna petequia.

Hoja de trabajo.
1º, ¿Cuánto tiempo se deja puesto el esfigmomanómetro en esta prueba ?
Durante 5 minutos.

2º. ¿Cómo se aprecian las petequias?
Como pequeñas manchas cutáneas de color rojizo.

3º. ¿Cuántas petequias debe contener el círculo para que el resultado sea claramente positivo?
Si hay mas de 20 de petequias.

4º. ¿En qué enfermedades hay una prueba de Rumpel-Leede positiva ?
En las trombocitopenias, en la enfermedad de von Willebrand, en el escorbuto y, sobre todo, en las púrpuras vasculares.

Resultado obtenidos.
El número de petequias aparecidas dentro del círculo es :
Menor de 10.

¿Han aparecido petequias fuera de la cara anterior del antebrazo? : No
¿Tienden a confluir la petequias ? No

Valoración de los resultados.
El resultado de la prueba es : Negativo.

¿Tiene el paciente una fragilidad capilar aumentada? No.

sábado, 7 de marzo de 2015

Práctica XLI : P3 (4/03/2015)

DETERMINACIÓN DEL TIEMPO DE PROTROMBINA (TP).
Fundamento.
En esta práctica el reactivo que vamos a utilizar es la tromboplastina histia y del calcio , que recibe el nombre de trombloplastina calcica.
El tromboplastina histica proviene de extractos de cerebro o pulmón de animales.
Materiales.
  • Una gradilla.
  • Cubeta de coagulómetro.
  • Un trocito de acero.
  • Rotulador de vidrio.
  • Una micropipeta de 100 y 200 microlitros.
  • Puntas de pipeta.
  • Un coagulómetro.
  • Un baño de agua.
  • 2 tubos de ensayo de plastico.
Reactivos.
  • Tromboplastina cálcica.
Muestra.
Plasma pobre en plaquetas (PPP).

Procedimiento.
Lo primero que hay que hacer es homogeneizar el reactivo sin agitarlo bruscamente.  También debemos atemperar el reactivo y la muestra para ellos podemos meterla en un baño a 37 º durante 5 minutos o tenerla en la mano duran unos minutos.Cuando la muestra  y el reactivo estén atemperados añadimos a una cubeta con una micropipeta 100 microlitros de plasma pobre en plaquetas, que previamente lo hemos conseguido centrifugando la sangre a 3000 rpm durante 10 minutos, y la rotulamos con la letra M; en otra cubeta añadimos 200 microlitros del reactivo (tromboplastina cálcica), el reactivo se tiene que incubar para ello lo colocamos en la celdas del coagulómetro durante 3 minutos. Colocamos la cubeta con la muestra y el reactivo en las celdas del coagulómetro y lo ponemos  en PTT. La cubeta con la muestra la debemos colocar en la celda de medida del coagulómetro y ponerle el tapón rojo encima, y se pulsa el botón de "RESERT" y  en ese momento se le añade con una micropipeta 200 microlitros del reactivo teniendo en cuenta que la punta de la pipeta no puede tocar el tapón rojo porque si lo toca el coagulómetro para de contar, cuando se le añade la tromboplastina cálcica se pone en marcha el magnetoagitador del coagulómetro y comienza la lectura de éste. Cuando se forma el coagulo el coagulómetro finaliza la lectura y nos indica el tiempo que pasa desde la adición de la tromboplastina cálcica.

Interpretación.

Hoja de trabajo.
1º. ¿Qué índice expresa la sensibilidad de una tromboplastina hística?
El ISI.
2º.¿ Cómo se llama la ratio de protrombina corregida?
Se denomina INR.

3º. ¿Cuál es el % normal de actividad de la protrombina?
El 100 -5 de actividad de protrombina.

4º. ¿En qué circunstancias se altera el TP?

Resultado obtenido.
TP de la muestra , en segundos:
37,2 segundos.

% de la actividad de la protrombina contenida en la muestra, obtenido mediante interpolación en la curva actividad preparada previamente:
50%

TP del plasma control normal no diluido (el de 100% de actividad ):
12,3 seg.

Ratio entre el TP de la muestra y el TP del control:
1,32

ISI de la tromboplastina hística utilizada:
1,24

INR=(TP del plasma del paiente/TP  de un plasma control anormal ) ^ ISI
INR = (37,2/12,3)^1,24=3,94

Valoración de os resultados.
La muestra ensayada tiene un TP:
Normal.

Práctica XL: P3 (6/03/2015).

PREPARACIÓN DE UNA CURVA DE ACTIVIDAD DE LA PROTROMBINA.
Fundamento.
Debemos realizar una bateria de diluciones, para obtener con el coagulometro el TP del plasma puro y de cada una de sus diluciones para realizar la curva.

Material.
  • 8 tubos de ensayo de plástico.
  • Rotulador de vidrio.
  • Una pipeta graduada de vidrio de 1 ml.
  • Una micripipeta de 100 y 200 microlitros.
  • 7 puntas de micropipeta.
  • 5 cubetas de coagulómetro.
  • 5 trocitos de acero especiales para depositar en el interior de las cubetas.
  • Un coagulómetro.
  • Una gradilla.
Reactivos.
  • Solución salina al 90 %.
  • Una tromboplastina cálcica.
  • Un pool de plasma normales.
Procedimiento.
Lo primero que hicimos en el pool de plasma, tomamos plasma congelado de otros años los atemperamos a 37º y los añadimos todos en un vaso de precipitados, y por último lo añadimos en los tubos de spenderfor.
Después tomamos 5 tubos de ensayo de plástico y los rotulamos con el porcentaje de actividad asignado a cada dilución que serían un tubo rotulado con 100 , otro con el de  50, otro con el de  33, otro con  25 y el último con el de 10.
Al tubo rotulado con % de actividad 100 le añadimos con una micropipeta 200 microlitros de pool de plasma ; al tubo 50 le añadimos 200 microlitros de pool de plasma y 200 microlitros de solución salina al 0,85 % ;al tubo 33 le añadimos 200 microlitros de pool de plasma y 400 microlitros de solución salina al 0,85%; al tubo 25 le añadimos 200 microlitros de pool de plasma y 600 microlitros de solución salina al 0,85% ; al tubo 10 le añadimos 200 micrilitros de pool de plasma y con una pipeta graduada de vidrio le añadimos 1,8 ml de solución salina al 0,85%.
Cuando ya tenemos los 5 tubos con pool de plasma y solución salina, con una micropipeta vertemos 100 microlitros de plasma puro y de cada una de sus diluciones en las cubetas rotuladas con el %de actividad que le corresponde. A cada una de las 5 cubetas le añadimos un trocito de acero.
Estas cinco cubetas las colocamos en la celdas que hay en el coagulómetro y en otra cubeta añadimos tromboplastina cálcica. En el coagulómetro le tenemos que añadir a cada cunbeta 200 microlitros de tromboplastina calcica.


Hoja de trabajo.
1º. ¿Con qué se diluye el pool de plasmas normales o el plasma control normal?
Con solución salina al 0,85 %

2º. ¿Qué porcentaje de actividad se asigna a la dilución del plasma control de 1/2?
 50 % de actividad.

3º. ¿ Cuándo se pone en marcha la lectura del coagulómetro?
Añadiendo a las diluciones 200 microlitros de tromboplastina cálcica.

4º. ¿Qué se anota en el eje de ordenadas?
Los valores en segundos del TP del plasma control no diluido y de cada una de sus diluciones.

Resultado obtenido.




Tiempo de Protrombina (PT)
Plasma control no diluido
(de 100% de actividad)
12 segundos
Plasma control diluido a 1/2
(de 50% de actividad)
19 segundos.
Plasma control diluido a 1/3
(de 33% de actividad)
25,3 segundos.
Plasma control diluido a 1/4
(de 25% de actividad)
32,4 segundos.
Plasma control diluido a 1/10
(de 10% de actividad)
65,1 segundos.








Práctica XXXVIII: P3 (3/03/2015).

DETERMINACIÓN DEL TEST DE HOWELL.
Fundamento.
Esta práctica se realiza añadiendo plasma rico en plaquetas en dos tubos de ensayo y se le añade cloruro cálcico. El resultado de este test es el tiempo comprendido desde que se le añade loruro cálcico hasta que se coagule la muestra.

Materiales.
  • Rotulador de vidrio.
  • 2 tubos de hemólisis de vidrio.
  • Micropipeta de 100 microlitros.
  • Baño de agua.
  • Cronómetro.
Reactivos.
  • Solución acuosa de cloruro sódico a una concentración del 0,85 %p/v.
  • Solución de cloruro cálcico 0,025 M.
  • Plasma control normal.
Muestra.
Un plasma rico en plaquetas (PRP).

Procedimiento.
Lo primero que se hace es centrifugar la sangre a 1000 rpm durante 10 minutos para conseguir plasma rico en plaquetas. Atemperamos la muestra y el reactivo a 37º y rotulamos un tubo con la letra M (muestra) y otro con la letra C (control). Depositamos dos tubos en el baño de agua , y vertemos con una micropipeta 100 microlitros de muestra y solución salina al tubo M y al tubo C le añadimos 100 microlitros de control comercial y de solución salina. A la mezcla anterior le agregamos 100 microlitros de  CaCl2 y tenemos que poner en marcha el cronómetro.A los dos tubos que están dentro del baño de agua lo tenemos que coger de la parte superior e inclinarlos hacia delante y hacia atrás, hasta que se observe enturbiamiento y una solidificación en los tubos de muestra y control. Cuando se observe ese enturbiamiento en los dos tubos paramos el cronómetro y ese es el tiempo que tarda en coagular la muestra y el control.


Resultado obtenido.
Tiempo que tarda en coagular la muestra:
130 segundos.
Tiempo que tarda el coagular el control:
115 segundos.

Hoja de trabajo.
1º. ¿Qué tipo de muestra se utiliza en esta prueba?
Plasma rico en plaquetas.

2º. ¿A qué concentración está el CaCl2 empleado en este test ?
A una concentración del 0,85% p/v.

3º. ¿Cuáles son los valores normales del test de Howell?
Los valores normales están comprendidos entre los 90 y 130 segundos.

4º. ¿Qué tratamiento puede ser controlado con este test?
En terapias con heparina.

Práctica XXXVII: P3 (2/03/2015).

DETERMINACIÓN DEL TIEMPO DE HEMORRAGIA CON LA TÉCNICA DE DUKE.

Fundamento.
El tiempo de hemorragia es el tiempo que transcurre desde una lesión hasta la formación del trombo blanco plaquetario.

Material.
  • Algodón. 
  • Un portaobjeto.
  • Una lanceta.
  • Papel de filtro.
  • Un cronómetro.
Reactivo.
Alcohol etílico de 96º.

Procedimiento.
  1. Desinfectar con un algodón embebido de  alcohol el lóbulo de la oreja seleccionada para realizar la prueba.
  2. Debemos dejar unos segundos para que se seque el alcohol.
  3. Pinchamos con la lenceta el lóbulo de la oreja seleccionada y desechamos la primera gota.
  4. Dejamos que salga sangre del lóbulo.
  5. Recogemos con el papel de filtro la gota de sangre que este el lóbulo cada 30 segundos. 
  6. Debemos cronometrar desde el momento que salga la primera gota de sangre hasta que deje de salir gotas de sangre del lóbulo.
Resultado.
El tiempo de hemorragia es 90 segundos.

Interpretación.
La persona esta sana.

Hoja de trabajo.
1º. ¿De quién es la técnica que se utiliza, en esta práctica, para determinar el tiempo de hemorragia?
Es la técnica de Duke.

2º. ¿ Cada cuánto tiempo se recoge la gota de sangre que está presente en el lóbulo de la oreja ?
Cada 30 segundos.

3º. ¿ Cuál es el tiempo de hemorragia normal?
Normalmente, la hemorragia se cohíbe espontáneamente en 1 a 3 minutos.

4º. ¿Qué fármaco aumenta, tras ser ingerido, el tiempo de hemorragia?
Ácido acetilsalicílico.

Resultado obtenido.
  • Número de manchas de sangre que han quedado marcadas en el papel de filtro: 3 manchas.
  • Tiempo transcurrido, desde que se ha puesto en marcha en cronómetro, hasta que se ha parado éste: 90 segundos.
Valoración de los resultados.
El tiempo de hemorragia obtenido:
Es normal.

martes, 3 de marzo de 2015

Práctica XXV: P3 (27/02/2015)

PRUEBA SE LA SACAROSA.
Fundamento.
Esta prueba consiste en situar los hematíes en un medio de baja fuerza ionica en este caso solución sacarosa. Así los hematíes fijan los complementos y los hematíes presentes en la muestras que tienen una sensibilidad mas alta que el complemento se lisan.
Materiales.
  1. Pipeta Pasteur.
  2. Pipeta graduada ( una de 5 ml, dos de 2 ml y 3 de 0,5ml)
  3. Micropipeta de 100 microlitro.
  4. Puntas de micropipeta.
  5. 6 tubos de centrifuga.
  6. Un reloj.
  7. Una centrifuga.
  8. Un espectrofotómetro.
  9. Cubetas de espectrofotómetro.
  10. Rotulados de vidrio.
  11. Una gradilla.
Reactivos.
  1. Solución acuosa de sacarosa.
  2. Sangre de la bolsa de sangre.
  3. Suero fisiológico.
Muestra.
 Sangre venosa.

Procedimiento.
Primero debemos tomar tres tubos de centrifuga y los debemos rotular. Tenemos que usar las siglas SF de suero fisiológico  en el primer tubo ,otro tubo con la sigla SC de sangre control y el último tubo con al sigla SP de sangre problema.
Debemos rellenar estos tres tubos con :
  1. Al primer tubo que seria el de suero fisiológico (SF) le añadimos con ayuda de una pipeta graduada 1,8 ml de suero fisiológico y con una micropipeta 0.2 ml de sangre problema.
  2. Al tubo de sangre control (SC) le añadimos con una pipeta graduada 1,8 ml de solución sacarosa y con ayuda de una micropipeta 0,2 ml de sangre control.
  3. Al tubo de sangre problema (SP) le añadimos con una pipeta graduada 1,8ml de solución de sacarosa y con una micropipeta 0,2 ml de sangre problema.

Tubo SF
Tubo SC
Tubo SP
Suero fisiológico
(en ml)
1,8


Solución sacarosa
(en ml)

1,8
1,8
Sangre control
(en ml)

0,2

Sangre problema
(en ml)
0,2

0,2
Una vez que hayamos llenado los tubos los agitamos suavemente. Dejamos los tubos en reposo durante 30 minutos y por último lo centrifugamos durante 5 minutos a 2000rpm.
En el espectrofotómetro.

  1. Primero tomar 3 tubos ( uno TB ( tubo blanco), TPr ( tubo problema), TPA (tubi patrón))
  2. En el tubo TB se le añade 5 ml de solución acuosa de amoniaco y 0,3 ml de suero fisiológico.
  3. En el tubo TPr se le añade 5 ml de solución acuosa de amoniaco y 0,3 del sobrenadante del tubo SP.
  4. En el tubo TP se le añade 5 ml de solución acuosa de amoniaco y 0,2 de la mezla del tubo SF.
  5. Pasar estas diluciones a tres cubetas.
  6. Por último llevar al espectrofotómetro y obtener su absorbancia.
Resultado.

 % de hemólisis= (A/Am)x100
% de hemólisis =(0,007/0,438)x100 =1,60 % de hemólisis.

Am= 0,007
Ap= 0,438
A= Absorbancia del líquido presente en el tubo problema.
Am= Absorbancia del líquido contenido en el tubo patrón ( A máximo)


Hoja de trabajo.
1º. ¿Con qué solución se hemolizan los hematíes vertidos en el tubo problema?
Cloruro cálcico.

2º. ¿ A qué concentración se prepara la solución de sacarosa?
A una concentración del 9,24%

3º. ¿ Como se llama también la sacarosa?
Azúcar común.

4º. ¿ Qué es el ACD?
Ácido  cítrico - dextrosa.

5º. ¿ Cómo se prepara el tubo blanco?
El tubo blanco se prepara vertiendo 5 ml de solución aminiaco y 0,3ml de suero fisiológico.

6º. ¿Qué porcentaje de hemólisis suele producirse, con la prueba de la sacarosa, en la sangre de la HPN?
 Entre el 10 y 80 % de hemólisis.

Resultado obtenido.

Lectura espectrofotométrica.
Tubo
A
% de hemólisis
Patrón.
0,438
100 %
Problema.
0,007
1,60 %

Valoración de los resultados.
  • Los hematíes problema: No tiene una sensibilidad aumentada al completo.
  • El enfermo: no padece una HPN.

Práctica XXIV :P3 (27/02/2015)

ESTUDIO DE LA FRAGILIDAD OSMÓTICA DE LOS HEMATÍES.
Fundamento.
Esta practica valora la resistencia de los hematíes a soluciones de presión osmótica decreciente y para ello se enfrentan a cloruro sódico.
Materiales.
  1. Dos pipetas Pasteur.
  2. Ocho tubos de centrifuga que sean iguales.
  3. Un reloj.
  4. Una centrifuga.
  5. Un espectrofotómetro.
  6. Cubetas de espectrofotómetro.
  7. Una gradilla.
Reactivo.
  1. Suero fisiológico.
  2. Agua destilada.
Muestra.
Sangre venosa.

Procedimiento.
Los primero que debemos de hacer es preparar 8 tubos de centrifuga que sean iguales entre sí.  Los ochos tubos deben estar perfectamente numerados, los cuatro primero se nombraran 1,2,3,4 y los otros cuatro se nombraran 15,16,17 y 18. 
A continuación añadimos a cada tubo 50 microlitros de sangre sin que toque la pared de los tubos.Después añadimos al tubo 1 18 gotas de suero fisiológico tamponado, al tubo 2 se le añade 1 gota de agua destilada y 17 gotas de suero fisiológico tamponado, al tubo 3 se le añade 2 gotas de agua destilada y 16 gotas de suero fisiológico, al tubo 4 se le añade 3 gotas de agua destilada y 15 gotas de suero fisiológico tamponado,  al tubo 15 se el añade 14 gotas de agua destilada y 4 gotas de suero fisiológico tamponado, al tubo 16 se le añade 15 gotas de agua destilada y 3 gotas de suero fisiológico  tamponado, al tubo 17 se le añade 16 gotas de agua destilada y 2 gotas de suero fisiológico tamponado y por último al tubo 18 se le añade 17 gotas de agua destilada y 1 gota se suero fisiológico tamponado.

Tubo nº
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
13
14
15
16
17
18
Agua destilada
(gotas)
0
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
13
14
15
16
17
Suero fisiológico
Tamponado
(gotas)
18
17
16
15
14
13
12
11
10
9
8
7
6
5
4
3
2
1
Concentración obtenida
(en g/l)
9
8,5
8
7,5
7
6,5
6
5,5
5
4,5
4
3,5
3
2,5
2
1,5
1
0,5

Agitamos suavemente los tubos hasta que se mezcle la sangre con la batería de cloruro sódico y lo dejamos reposar durante 30 minutos a temperatura ambiente. Pasado este tiempo se centrifuga los 8 tubos durante 5 minutos a 2000 rpm.

Por último sacamos el sobrenadante y lo ponemos en las cubetas; estas cubetas las metemos en el espectrofotómetro y anotamos su absorbancia.

Resultado.

Tubo 1 ---> 0,248
Tubo 2 --->1,001
Tubo 3 ---->0,694
Tubo 4 --->0,532
Tubo 15 --->0,964
Tubo 16 --->1,021
Tubo 17 --->1,022
Tubo 18 --->1,060

% de hemólisis = (A/AM)X100
A = Absorbancia del líquido presente en el tubo analizado.
Am= Absorbancia del líquido contenido en el tubo nº 18 ( A máximo)

Tubo 1.

% de hemólisis =( 0,248/1,060)x100 = 23,39 %

Tubo 2.

% de hemólisis = (1,001/ 1,060) x 100= 94,43

Tubo 3.

% de hemólisis= (0,694/1,060) x100= 65,74%

Tubo 4.

% de hemólisis= (0,532/1,060) x100 = 50,18%

Tubo 15.

% de hemólisis= (0,964/1,060) x100 = 90,94%

Tubo 16.

% de hemólisis= (1,021/1,060) x100 = 96,32%

Tubo 17.

% de hemólisis=(1,022/1,060) x100 = 96,41%

Tubo 18.

% de hemólisis=(1,060/1,060) x100 = 100%

Hoja de trabajo.
1º. ¿ Qué concentración de NaCl tiene el suero fisiológico?
9 gramos de cloruro sódico.

2º ¿ En qué porcentaje se puede incrementar normalmente el volumen de los hematíes sin que éstos se rompan?
Se puede incrementar su volumen en un 70 % como máximo.

3º¿Qué sustancia se emplea para anticoagular la sangre en esta prueba?
cloruro sódico.

4º En esta prueba,¿cuál es la concentración salina menor a la que se preparan las soluciones?
9 g/l.

5º En condiciones normales,¿ a qué concentración salina suele producirse una hemólisis del 50%?
a 4,5 y 4 g/l.

6º ¿En qué enfermedades se produce una disminución de la ROE ?
En la esferocitosis hereditaria, estomacitosis hereditaria.

Resultados obtenido.
Lectura visual.

  • Primer tubo en el que se observa con claridad una hemólisis parcial: 10
Concentración de la solución salina contenida en este tubo:4,5 g/l
  • Primer tubo en el que se aprecia una hemólisis prácticamente total :14
Concentración de la solución salina presente en este tubo :2,5 g/l

Tubo nº
A
% de hemólisis.
1
0,248
23,39 %
2
1,001
94,43
3
0,694
 65,74%
4
0,532
50,18%
5
No
No
6
No
No
7
No
No
8
No
No
9
No
No
10
No
No
11
No
No
12
No
No
13
No
No
14
No
No
15
0,964
90,94%
16
1,021
96,32%
17
1,022
96,41%
18
1,060
100%

  • Concentración de la solución salina que da lugar  a una hemólisis del 50% : 4 g/l

Valoración de los resultados.
  • La fragilidad osmótica  de los hematíes contenidos en la sangre estudiada es: Normal.
  • La ROE de la sangre analizada es: normal.